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1.广东药科大学 中药学院,广州 510006
2.中国中医科学院 中药资源中心 道地药材国家重点实验室培育基地,北京 100700
3.湖北梦阳药业,湖北 荆门 448124
郑媛,在读硕士,从事中药资源与鉴定学研究,E-mail:zyzy06@163.com
南铁贵,副研究员,从事中药质量评价研究,Tel:010-64087649,E-mail:nantiegui@ 163.com
* 袁媛,研究员,博士生导师,从事中药鉴定与分子生药学研究,Tel:010-64087649,E-mail:y_yuan0732@163.com; *
收稿日期:2021-02-19,
网络出版日期:2021-05-06,
纸质出版日期:2021-07-20
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郑媛,李仰华,韩鹏杰等.外源性物质对猪苓菌丝体生长及多糖含量的影响[J].中国实验方剂学杂志,2021,27(14):129-137.
ZHENG Yuan,LI Yang-hua,HAN Peng-jie,et al.Effects of Exogenous Substances on Growth of Polyporus umbellatus Mycelium and Its Polysaccharide Content[J].Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae,2021,27(14):129-137.
郑媛,李仰华,韩鹏杰等.外源性物质对猪苓菌丝体生长及多糖含量的影响[J].中国实验方剂学杂志,2021,27(14):129-137. DOI: 10.13422/j.cnki.syfjx.20210911.
ZHENG Yuan,LI Yang-hua,HAN Peng-jie,et al.Effects of Exogenous Substances on Growth of Polyporus umbellatus Mycelium and Its Polysaccharide Content[J].Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae,2021,27(14):129-137. DOI: 10.13422/j.cnki.syfjx.20210911.
目的
2
为探讨不同外源性物质对猪苓菌丝生长发育的影响,系统研究了不同浓度外源性物质处理后猪苓菌丝生长速度及其多糖含量,以期筛选出猪苓菌丝的最佳生长条件,为其规模化人工培养提供参考。
方法
2
采用平皿培养真菌的方法,将猪苓菌丝放在含有不同外源性物质的培养基上进行了培养,以菌落直径来判断菌丝的生长速度,苯酚-硫酸法测定猪苓菌丝的多糖含量。
结果
2
高浓度环磷腺苷酸,6-苄氨基嘌呤(6-BA),赤霉素(GA),2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D),维生素(V)B
1
,VB
3
,VB
6
,VB
9
,VB
12
处理组均促进了猪苓菌丝生长,而吲哚乙酸(IAA),VC,VB
2
处理组均抑制了猪苓菌丝生长;高浓度环磷腺苷酸,6-BA,GA,2,4-D,VB
1
,VB
3
,VB
6
,VB
9
,VB
12
处理组均提高了猪苓菌丝多糖含量,而IAA,VB
2
处理组均降低了其多糖含量。高浓度VC处理组对猪苓菌丝生长抑制最为明显,但能显著增加猪苓菌丝多糖含量;环磷腺苷酸浓度为2 mmol·L
-1
,6-BA,GA,2,4-D,VB
1
,VB
2
,VB
3
,VB
9
,VB
12
质量浓度分别为6,15,2,4,2,4,6,10 mg·L
-1
时,均有利于猪苓菌丝生长和多糖含量的累积。
结论
2
通过在培养基中添加外源物质可以调控猪苓菌丝的生长发育,改变猪苓菌丝生长速度和多糖含量的累积。
Objective
2
To explore the effects of diverse exogenous substances at different concentrations on the growth of
Polyporus umbellatus
mycelium and polysaccharide content and screen out the optimal growth condition for
P. umbellatus
mycelium, so as to provide a reference for its large-scale artificial cultivation.
Method
2
P. umbellatus
mycelium was cultured in media containing different exogenous substances using the method for fungal culturing in plate. The growth rate of the mycelium was judged by the colony diameter and the polysaccharide content was determined by the phenol-sulfuric acid method.
Result
2
The high-dose cyclic adenosine monophosphate, 6-benzyl aminopurine (6-BA), gibberellic acid (GA), 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), vitamin (V) B
1
, VB
3
, VB
6
, VB
9
, and VB
12
all promoted the growth of
P. umbellatus
mycelium and elevated polysaccharides content. By contrast, indole acetic acid (IAA), VC, and VB
2
inhibited its growth, with the most obvious inhibition detected in the high-dose VC group. IAA and VB
2
both reduced the polysaccharide content, whereas the high-dose VC significantly increased the polysaccharide content. Cyclic adenosine monophosphate, 6-BA, GA, 2,4-D, VB
1
, VB
3
, VB
6
, VB
9
, and VB
12
at the concentrations of 2 mmol·L
-1
, 6 mg·L
-1
, 15 mg·L
-1
, 2 mg·L
-1
, 4 mg·L
-1
, 2 mg·L
-1
, 4 mg·L
-1
, 6 mg·L
-1
, and 10 mg·L
-1
, respectively, contributed to the growth of
P. umbellatus
mycelium
and polysaccharide accumulation.
Conclusion
2
The growth of
P. umbellatus
mycelium and polysaccharide accumulation can be regulated by adding exogenous substances to the culture medium.
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